본문 바로가기
KERD
논문KCI 등재

바이러스성 출혈성 패혈증 바이러스 (Viral Hemorrhagic Septicemia Virus) 감염 넙치 (Paralichthys olivaceus)의 조직별 바이러스 정량분석

Quantitative analysis of viral hemorrhagic septicemia virus in tissues of infected olive flounder (Paralichthys olivaceus)

1

조회

0

다운로드

0

인용

0

참고문헌

키워드

초록

국내외에서 80여 종이 넘는 담수 및 해산어류를 감염시켜 대량폐사를 발생시키는 바이러스성 출혈성 패혈증 바이러스 (VHSV) 진단검사를 위해 넙치의 여러 조직의 바이러스 발현량에 대한 정량적 데이터를 시간순서에 따라 분석하였다. 무작위 선별된 넙치에 3.0E+07 TCID50 per 0.1 mL per fish의 VHSV를 복강 주사하여 시간순서 (0시간, 6시간, 12시간, 1일, 2일, 3일, 5일, 7일)에 따라 조직 (아가미, 간, 신장, 비장, 근육)을 채취하였다. Real-time PCR 법을 통해 상대 정량한 결과 5일차 아가미, 간, 신장, 비장에서 바이러스의 발현량이 가장 높게 나타났다. 이번 연구를 통해 감염 초기단계에서 비장이 VHSV 확정진단을 위한 적정조직임을 입증하였으며, 국내 법정전염병 진단에 중요한 정보를 제공할 것이다.

Abstract

A diagnostic test for viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV), which infects more than 80 species of freshwater and marine fish at home and abroad, causing mass mortality, was conducted to provide quantitative data on the amount of virus expression in various tissues of flounder in chronological order. The tissues were collected in chronological order after the intraperitoneal injection of 3.0E+07 tissue culture infective dose50 (TCID50) per 0.1 mL per fish of VHSV to randomly selected flounder. As a result of relative quantification through real-time PCR, the highest levels of virus expression were found in the spleen, kidney, gill, and liver on day 5. This study proved that the spleen was an appropriate site for the final diagnosis of VHSV in the early stages of infection and will provide important information for the diagnosis of legal infectious diseases in Korea.

참고문헌 (31)

  1. 안상중, "아시아에서 분리된 viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV) isolates의 계통분석학적 비교", 한국어병학회지, 26(3), pp.149~161 (2013), 한국어병학회[DOI]
  2. Ariel E, "Assessment of a commercial kit collection for diagnosis of the fish viruses: IHNV, IPNV, SVCV and VHSV", Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol, 21, pp.6~11 (2001)
  3. Bernard J, "Nucleocapsid gene sequence of a North-American isolate of viral hemorrhagic septicemia virus, a fish Rhabdovirus", J. Gen. Virol, 73, pp.1011~1014 (1992)
  4. Bland F, "Genotypespecific Taqman assays for the detection and rapid characterization of European strains of viral haemorrhagic septicaemia virus", J. Virol. Methods, 187, pp.209~214 (2012)
  5. Duesund H, "Characterization of a VHS virus genotype III isolated from rainbow trout(Oncorhychus mykiss)at a marine site on the west coast of Norway", Virol. J, 7, pp.19~ (2010)
  6. Einer-Jensen K, "Evolution of the fish rhabdovirus viral haemorrhagic septicaemia virus", J. Gen. Virol, 85, pp.1167~1179 (2004)
  7. Elsayed E, "Isolation of viral haemorrhagic septicaemia virus from muskellunge, Esox masquinongy, in lake St. Clari, Michigan, USA reveals a new sublineage of the North American genotype", J. Fish Dis, 29, pp.611~619 (2006)
  8. Gadd T, "Epidemiological aspects of viral haemorrhagic septicaemia virus genotype II isolated from Baltic herring, Clupea harengus membras L", J. Fish Dis, 34, pp.517~529 (2011)
  9. Gagné N, "Isolation of viral haemorrhagic septicaemia virus from mummichog, stickleback, striped bass and brown trout in eastern Canada", J. Fish Dis, 30, pp.213~223 (2007)
  10. Garver KA, "Development and validation of a reverse transcription quantitative PCR for universal detection of viral hemorrhagic septicemia virus", Dis. Aquat. Org, 95, pp.97~112 (2011)
  11. Guðmundsdóttir S, "Outbreak of viral haemorrhagic septicaemia(VHS)in lumpfish(Cyclopterus lumpus)in Iceland caused by VHS virus genotype IV", J. Fish Dis, 42, pp.47~62 (2019)
  12. Hedrick RP, "Host and geographic range extensions of the North American strain of viral hemorrhagic septicemia virus", Dis. Aquat. Org, 55, pp.211~220 (2003)
  13. 황지연, "Enzyme-linked immunosorbent assay를 이용한 바이러스성 출혈성 패혈증 바이러스 감염 넙치(Paralichthys olivaceus)의 특이 항체반응 검사", 한국수산과학회지, 50(5), pp.547~552 (2017), 한국수산과학회[DOI]
  14. Jonstrup SP, "Development and validation of a novel Taqman-based real time RT-PCR assay suitable for demonstrating freedom from viral haemorrhagic septicaemia virus", J. Fish Dis, 36, pp.9~23 (2013)
  15. Hyunsu Kim, "Genome based quantification of VHSV in multiple organs of infected olive flounder (Paralichthys olivaceus) using real-time PCR", Genes & Genomics, 42(7), pp.773~777 (2020), 한국유전학회[DOI]
  16. Kim JO, "Development and application of quantitative detection method for viral hemorrhagic septicemia virus(VHSV)genogroup IVa", Viruses, 6, pp.2204~2213 (2014)
  17. 김수미, "우리 나라 양식 넙치, Paralichthys olivaceus에서 분리된 VHSV(Viral Hemorrhagic Septicemia Virus)의 유전학적 검토", 한국어병학회지, 16(1), pp.1~12 (2003), 한국어병학회
  18. 이월라, "남.서해안과 동중국해 자연산 어류에서 Viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) 검출", 한국어병학회지, 20(3), pp.201~209 (2007), 한국어병학회
  19. Livak KJ, "Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCT method", Methods, 25, pp.402~408 (2001)
  20. Mackay IM, "Real-time PCR in the microbiology laboratory", Clin. Microbiol. Infect, 10, pp.190~212 (2004)
  21. "Viral Haemorrhagic Septicaemia. Manual of Diagnostic Tests for Aquatic Animals" (2017)[URL]
  22. 박현경, "2015년 제주도 양식 넙치(Paralichthys olivaceus)를 대상으로 한 VHS 및 RSIVD 모니터링", 한국수산과학회지, 49(2), pp.176~183 (2016), 한국수산과학회
  23. 박현경, "2014년 제주도 양식 넙치, Paralichthys olivaceus에 대한 VHS 및 RSIVD 모니터링", 수산해양교육연구, 27(3), pp.879~889 (2015), 한국수산해양교육학회
  24. Pierce LR, "Evolution and biogeography of an emerging quasispecies : Diversity patterns of the fish Viral Hemorrhagic Septicemia virus(VHSV)", Mol. Phylogenet. Evol, 63, pp.327~341 (2012)
  25. Reed LJ, "A simple method of estimating fifty per cent endpoints", Am. J. Epidemiol, 27, pp.493~497 (1938)
  26. Skall HF, "Viral haemorrhagic septicaemia virus in marine fish and its implications for fish farming-a review", J. Fish Dis, 28, pp.509~529 (2005)
  27. Soliman H, "Reverse transcription loop-mediated isothermal amplification(RT-LAMP)for rapid detection of viral hemorrhagic septicaemia virus(VHS)", Vet. Microbiol, 114, pp.205~213 (2006)
  28. Thompson TM, "Emergence of viral hemorrhagic septicemia virus in the North American Great Lakes region is associated with low viral genetic diversity", Dis. Aquat. Org, 96, pp.29~43 (2011)
  29. Traxler GS, "Mass mortality of pilchard and herring associated with viral hemorrhagic septicemia virus in British Columbia, Canada", FHS Newsl, 27, pp.4~5 (1999)
  30. Trdo N, "Virus Taxonomy: Eighth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses", pp.623~644 (2005), Academic Press
  31. Winton J, "Detection of Viral Hemorrhagic Septicemia Virus. No. 2007-3055", United States Geological Survey, ~ (2007)

관련 논문AI추천

넙치 치어에서의 바이러스성출혈성 패혈증 감염에 따른 체내 바이러스분포 및 초기면역유전자 발현 비교김수진, 방지형, 오명주수산생명의학회 · 한국어병학회지2023 · 제36권 제1호넙치의 생식소를 통한 바이러스성출혈성패혈증바이러스(VHSV) 수직감염 가능성신소령, 오명주, 윤수영, 장요셉수산생명의학회 · 한국어병학회지2025 · 제38권 제1호넙치에서 체중별 VHSV 최소 감염 농도와 환경 요인별 생존능 분석을 통한 수평 전파 위험 평가강효영, 권문경, 김도형, 김재옥, 노형진, 박지연, 이윤항, 이주엽, 허영웅수산생명의학회 · 한국어병학회지2025 · 제38권 제2호Pathogenicity of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) isolated from olive flounder Paralichthys olivaceus to masu salmon Oncorhynchus masou김위식, 김정호, 오명주, Toyohiko Nishizawa수산생명의학회 · 한국어병학회지2012 · 제25권 제2호남.서해안과 동중국해 자연산 어류에서 Viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) 검출김석렬, 오명주, 윤현미, 이월라, 정성주수산생명의학회 · 한국어병학회지2007 · 제20권 제3호In-situ hybridization 법을 사용한 양식 넙치, Paralichthys olivaceus의 바이러스 감염 질병 특성 고찰김경길, 김이청, 도정완, 박정우, 이남실, 정승희, 최혜승수산생명의학회 · 한국어병학회지2013 · 제26권 제3호

이 간행물의 다른 논문 (16건)